CoRTecS

Detail

The core facility

TGV WT APL 3.tiff

Cell Biology, Imaging, molecular Biology, Biochemistry, Genomics, systems Biology, Development, strucural Biology INSECTARIUM - IBMC

  • Head Manager of the core facility Jean-Luc IMLER
  • Scientifical Manager Stéphanie BLANDIN
  • Technical Manager Ludivine RAMOLU
  • FR 1589 - IBMC / Institute of Molecular and Cellular Biology
  • CNRS
  • Central campus : Esplanade
  • Established in an unic site
  • Service delivery
    • to the academic community
    • to the socio-economic world
  • Collaborations of research
    • with the academic community
    • to the socio-economic world
  • Affiliated institution of administrative supervision
    • CNRS
INSECTA

L’insectarium est une plateforme de l’Institut de biologie moléculaire et cellulaire (IBMC) à Strasbourg. Elle offre à l’ensemble de la communauté scientifique, publique et privée, une installation technique de pointe, avec plus de 170 m2 de chambres climatiques et de laboratoires dédiés à l’élevage de moustiques (Anopheles et Aedes) et à la production de lignées génétiquement modifiées. Elle bénéficie de l’expertise du laboratoire Modèles insectes d’immunité innée (UPR9022) de l’Université de Strasbourg pour le développement des outils de biologie moléculaire et des protocoles pour la production de moustiques transgéniques et mutants CRISPR-Cas9.
La plateforme réalise également l’infection de moustiques avec des pathogènes humains de classe 3 (virus de la dengue, zika, Plasmodium falciparum) dans des locaux de confinement de niveau 3, équipés notamment de boites à gants de confinement permettant la manipulation des individus infectés. Elle accueille des chercheurs pour réaliser des expériences d’infection et leur propose des formations aux techniques spécifiques développées sur la plateforme.

Access website

Expertises

Scientific expertise

  • Moustiques
  • Aedes
  • Anopheles
  • Virus
  • Dengue
  • Zika
  • Paludisme
  • Plasmodium falciparum
  • Plasmodium berghei
  • Réponses immunitaires chez les insectes
  • Immunité innée

Technical expertise

  • Élevage de moustiques
  • CRISPR CAS9
  • Génétique des moustiques
  • Transgénèse des moustiques
  • ARN interférence
  • Infection des moustiques
  • Agents pathogènes de classe III
  • Tests pharmacologiques
  • Test de blocage de la transmission des pathogènes aux moustiques
  • Culture de parasites du paludisme
  • Culture de virus
  • Biologie moléculaire
  • Biologie cellulaire

Resources

Main equipments

  • Plateforme de micro-injection incluant : un microscope inversé ECLIPSE TE200-S (NIKON), un microinjecteur FemtoJet 4X et un micromanipulateur TransferMan NK 2 (Eppendorf)
  • Trieurs de larves de moustique (COPAS)
  • Lecteur de plaque multimode à double injecteur VARIOSKAN (ThermoFischer Scientific)
  • Loupes binoculaires (ZEISS, OLYMPUS, LEICA)
  • Loupes binoculaires à fluorescence avec caméra SMZ18 et AZ100 (NIKON), Discovery DV8 (ZEISS)
  • Incubateurs CO2 et multigaz CO2/N2 150L (Panasonic)
  • Système d’imagerie cellulaire EVOS M5000 (ThermoFischer Scientific)
  • Microscope droit DM 2000 LED avec caméra DFC 3000 G (Leica)
  • Cytomètre en flux ACCURI (BD Bioscience)
  • Systèmes de repas sanguin à membrane (Hemotek) et en verre (Glass Instrument) avec bain-marie (JULABO)
  • PSMII avec banc d’anesthésie gazeuse pour souris intégré Solis 120 (NOROIT&MINERVE)
  • Portoir ventilé ISOCAGE (Tecniplast)
  • Boites à gants de confinement pour insectes infectés (incluant 4 boites à gants avec contrôle de la température et de l’humidité)
  • Macroscopes à fluorescence avec caméra AxioZoom V100 (ZEISS)

Ministerial autorisations to experiment

  • Authorisasion to contribute directly in testing
  • Nominative authorisasion for animal testing
  • Approval of using animals for scientific purposes
  • Approval of using genetically modified organisms in contained environment

Specific rooms

  • Laboratory L1
  • Laboratory L2
  • Laboratory L3
  • Animal house A1
  • Animal house A2
  • Animal house A3

Examples of service delivery

  • Fourniture de moustiques Aedes et Anopheles d’élevage et de produits dérivés : Œufs,larves,adultes, échantillons broyés dans tampons pour extraction ARN/ADN/Protéines, organes fixés sur lame.
  • Caractérisation de moustiques isolés de zones d’épidémie et veille sanitaire : Espèce, sexe, virus ou parasites infectants, séquençage de petits ARN, ou autres : prendre contact avec la plateforme.
  • Fourniture de moustiques génétiquement modifiés et de produits dérivés : Œufs, larves, adultes, échantillons broyés dans tampons pour extraction ARN/ADN/Protéines, organes fixés sur lame, plasmides de transgénèse.
  • Inactivation de gènes de moustiques Aedes ou Anopheles par ARN interférence et phénotypage.
  • Établissement de lignées de moustiques transgéniques dans des sites d’intégration caractérisés ou édition de gènes.
  • Établissement de lignées homozygotes de moustiques transgéniques et expérimentations.
  • Formation à l’injection d’œufs de moustiques.
  • Criblage de molécules sur P. falciparum (in vitro) et P. berghei (in vivo) sur stades asexués, stades sexués et transmission aux moustiques.
  • Fourniture de moustiques Aedes infectés par des virus, de moustiques Anopheles par P.falciparum et de produits dérivés : Adultes infectés, échantillons broyés dans tampons pour extraction ARN/ADN/Protéines, organes fixés sur lame.
  • Formation aux risques biologiques en laboratoire de niveau de sécurité biologique III.